Aktualności

  • 1st Czechoslovak Congress of Medical Genetics 2025

    In the spring, we will participate in the 1st Czechoslovak Congress of Medical Genetics, which will take place from April 2–4, 2025, at the Cultural and Congress Center Elektra in the spa town of Luha...

    Czytaj więcej
  • RANK 2025

    Visit us at the 19th edition of the RANK 2025 conference, which will take place on March 19th and 20th at the Zlatá Štika Hotel in Pardubice. The conference is organized by the Czech Society of Clinic...

    Czytaj więcej
  • Kapras Day 2025

    We would like to invite you to the 23rd Kapras Day on the topic of  "Clinical Genetics," which will take place on Wednesday, February 26, 2025, in the Congress Hall of Hotel Olšanka in Prague. We loo...

    Czytaj więcej
Archiwum aktualności
https://www.carolinabiosystems.cz/1199-thickbox_default/quantumscript-reverse-transcriptase.jpg View full size

QuantumScript™ Reverse Transcriptase

Kontakt z nami

SSII-100

Universal Reverse Transcriptase jest mutacją odwrotnej transkryptazy M-MLV (Moloney Murine Leukemia Virus) z zredukowaną aktywnością RNazy H i zwiększoną termostabilnością.

Opis:

QuantumScript™ Reverse Transcriptase to nowa zmutowana wersja odwrotnej transkryptazy M-MLV (Moloney Murine Leukemia Virus) o minimalnej aktywności RNazy H i zwiększonej termostabilności. Enzym jest oczyszczany do jednorodności, co zapewnia wysoką wydajność. Optymalna temperatura syntezy pierwszego łańcucha cDNA dla tego enzymu wynosi 42°C, a rozmiar produktu cDNA mieści się w zakresie od 100 pb do 7 Kb.

Numer katalogowy: SSII-100, SSII-200 i SSII-300

Źródło: E. coli

Stężenie: 200 jednostek/μl

Bufor przechowywania: 20 mM Tris-HCl (pH 7.5), 1 mM DTT, 0.05% Triton X-100 (v/v), 0.1 mM EDTA, 0.1 M NaCl i 50% glicerolu (v/v)

Bufor reakcji (5x): 250 mM Tris-HCl (pH 8.3), 375 mM KCl, 15 mM MgCl2 i 50 mM DTT

Definicja jednostki: Jedna jednostka enzymu wbudowuje 1 nmol dTTP w materiał kwasowy w 10 minut przy 37˚C, używając poli(A): oligo(dT)25 jako matrycy-i startera.

Kontrola jakości: Ten enzym przeszedł testy kontroli jakości: analiza SDS-PAGE w zakresie czystości, funkcjonalna absencja aktywności endonukleazy/nikazy, funkcjonalna absencja aktywności egzonukleazy, funkcjonalna absencja aktywności proteazy.

Przechowywanie i obsługa: -20˚C

Protokół

Synteza pierwszego łańcucha cDNA Materiały dostarczane przez użytkownika:

Inhibitor RNAzy (Cat.# RNIN-100, RNIN-200, RNIN-300) dNTP, 10 mM (Cat.# dNTP-10M, dNTP-25M) Woda nukleazowa Poniższa procedura używa 10 pg do 5 µg całkowitego RNA lub 10 pg do 500 ng mRNA.

W sterylnym mikrocentryfugowym probówce RNazowej dodaj startery (200-500 ng oligo(dT)12-18, 50-250 ng startera losowego lub 2 pmol starterów specyficznych). Podgrzej probówkę do 70°C przez 5 minut, a następnie inkubuj na lodzie przez 1 minutę, aby denaturować ewentualne struktury wtórne w obrębie matrycy. Krótko obróć, aby zbierać roztwór na dnie probówki. Dodaj do scharakteryzowanego startera/matrycy w kolejności pokazanej poniżej. Uwaga: Nie zmieniaj proporcji startera do mRNA. 5 µl 5X buforu reakcji; 5 µl 10mM mieszanki dNTP (10mM każdego dATP, dGTP, dCTP i dTTP) 25 jednostek inhibitora RNAzy 0,5 µl QuantumScript Reverse Transcriptase (100 u/μl) Dodaj wodę nukleazową do objętości końcowej 25 µl Delikatnie wymieszaj. Dla starterów losowych inkubuj probówkę w 25°C przez 5 minut. Przeprowadź syntezę pierwszego łańcucha przy 42°C przez 30-60 minut. Temperatura reakcji może być zoptymalizowana między 50°C a 60°C dla trudnych matryc o wysokiej strukturze wtórnej. Zdezaktywuj enzym, inkubując go w 70°C przez 15 minut po reakcji. Przed wykonaniem amplifikacji PCR po kroku 4, zaleca się usunięcie RNA przed amplifikacją PCR, aby zapewnić uzyskanie produktu PCR. Dodanie 2 jednostek RNazy H (Cat. # RNHE-100, RNHE-200, RNHE-300) i inkubacja przez 20 minut w 37°C jest zalecane do usunięcia RNA. Standardowe protokoły dla syntezy drugiego łańcucha można znaleźć w literaturze [2]. Uwaga: 5X bufor reakcji jest kompatybilny z enzymami używanymi w licznych technikach analizy DNA. Typowo nie ma potrzeby ekstrakcji fenolowej ani osadzania etanolu z użyciem tego protokołu przed jakąkolwiek amplifikacją PCR.

Referencje:

Roth, M.J., Tanese, N. and Goff, S.P. (1985) Purification and characterization of murine retroviral reverse transcriptase expressed in Escherichia coli. J. Biol. Chem. 260, 9326–35. Sambrook, J., Fritsch, E.F. and Maniatis, T. (1989) In: Molecular Cloning: A; Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, New York, 8.64.

Koszyk  

Brak produktów

0,- Kč Razem

Koszyk Realizuj zamówienie