
In the spring, we will participate in the 1st Czechoslovak Congress of Medical Genetics, which will take place from April 2–4, 2025, at the Cultural and Congress Center Elektra in the spa town of Luha...
Czytaj więcejVisit us at the 19th edition of the RANK 2025 conference, which will take place on March 19th and 20th at the Zlatá Štika Hotel in Pardubice. The conference is organized by the Czech Society of Clinic...
Czytaj więcejWe would like to invite you to the 23rd Kapras Day on the topic of "Clinical Genetics," which will take place on Wednesday, February 26, 2025, in the Congress Hall of Hotel Olšanka in Prague. We loo...
Czytaj więcejI-5 Hi-Fi DNA HotStart Polymerase jest polimerazą DNA o ultra-szybkim działaniu i wysokiej dokładności. Zapewnia wydajną amplifikację trudnych matryc, takich jak plazmidy, BACS, DNA genomowe i DNA lambda. Pozwala na amplifikację do 10 kb ludzkiego DNA genomowego i do 21 kb DNA lambda. Ma prędkość przedłużania wynoszącą 1 kb / 10-15 sekund, w zależności od rodzaju matrycy. Pozwala to użytkownikom zaoszczędzić czas, przyspieszając reakcje PCR, oraz zapewnia wyższą dokładność niż Taq czy Pfu. Enzym zawiera mechanizm HotStart, który dezaktywuje enzym do momentu podgrzania. Pozwala to na przygotowanie reakcji PCR w temperaturze pokojowej, eliminując obawy związane z dimery primerów lub nieswoistą preamplifikacją.
Cechy:
Źródło: E. coli
Zastosowania:
Dostarczony z:
Dostarczony w (opis bufora): 20 mM Tris-HCl, 100 mM KCl, 1 mM DTT, 0,1 mM EDTA, 200 µg/ml BSA, 50% glicerolu, 1X stabilizator, pH 8.0 @ 25°C
Warunki przechowywania: -20ºC
Definicja Jednostki: Jednostka to ilość enzymu, która w ciągu 15 minut przy 72°C wbudowuje 5 nmol dNTP do nierozpuszczalnego w kwasie materiału.
Dane eksperymentalne:
Porównanie polimeraz DNA o wysokiej dokładności: I5 (MCLAB), KAPA (Roche) i Q5 (NEB)
Dokładność polimerazy DNA oceniana jest przez współczynnik błędów, tj. procent substytucji zasad na cykl PCR (przy efektywności replikacji 2.0). Współczynniki błędów polimerazy DNA I5 (MCLAB), KAPA (Roche) i Q5 (NEB) zostały zmierzone zarówno za pomocą sekwencjonowania Sangera, jak i sekwencjonowania nowej generacji (Illumina_MiSeq) (Tabela 1).
Polimeraza DNA | I5 | KAPA | Q5 |
---|---|---|---|
Sekwencjonowanie Sangera (błąd /100,000bp) | 0.9 | 1.7 | 0.9 |
NGS_Illumina (błąd /100,000bp) | 1.6 | 1.3 | 2.5 |
Wnioski:
Dokładność polimerazy DNA I5 firmy MCLAB jest ultra-wysoka, z przeciętnie 1.25 błędu na 100,000 par zasad zarówno według sekwencjonowania Sangera, jak i NGS_Illumina, co jest przynajmniej równoważne dokładności KAPA lub Q5.
Metody:
W tym teście I5 zostało przebadane pod kątem swojej dokładności w porównaniu z polimerazami DNA KAPA i Q5. Matrycą o długości 2000 pb było amplifikowane PCR z użyciem I5, KAPA lub Q5 przez 35 cykli. Wskaźniki błędów PCR zostały ustalone za pomocą sekwencjonowania Sangera (Rysunek 1) i NGS_Illumina (Rysunek 2). Dane surowe zostały znormalizowane za pomocą równania:
e=n(f⋅2)
gdzie f to procent błędów zmierzonych po PCR, a n to liczba rzeczywistych cykli PCR.
Rysunek 1. Ocena dokładności polimerazy PCR za pomocą sekwencjonowania Sangera.
Rysunek 2. Ocena dokładności polimerazy PCR za pomocą sekwencjonowania nowej generacji (Illumina_MiSeq).
Referencje: Frey, B. and Suppman, B. (1995). BioChemica. 2, 34-35. Chester, N. and Marshak, D.R. (1993). Analytical Biochemistry. 209, 284-290.
Warunki wysyłki: suchy lód
Protokół
25 µl Reaction | 50 µl Reaction | Final Concentration | |
Instructions | |||
25 µl Reaction | 50 µl Reaction | Final Concentration | |
I-5 5X Buffer | 5 ul | 10 ul | 1X (see notes) |
10 µM Primer A | 1 µl | 2 µl | 400 µM |
10 µM Primer B | 1 µl | 2 µl | 400 µM |
Template DNA | as needed | as needed | see notes |
50mM MgCl2 | as needed | as needed | see notes |
I-5 Enzyme | 0.5 - 1 ul | 1 - 2 ul | |
Water (ddH2O) | up to 25 µl | up to 50 µl | |
Thermocycling Conditions | |||
3 Step PCR | |||
Step | Temperature | Time | |
Initial Denaturation | 98°C | 2 minutes | |
Denaturation | 98°C | 10 seconds | 25-35 cycles |
Annealing | 55°C - 68°C | 10-15 seconds | |
Extension | 72°C | 10-15 seconds / kb | |
Final Extension | 72°C | 1-5 minutes | |
4°C | Hold | ||
2 Step PCR (see notes) | |||
Step | Temperature | Time | |
Initial Denaturation | 98°C | 2 minutes | |
Denaturation | 98°C | 10-15 seconds | 25-35 cycles |
Combined Annealing & Extension | 72°C | 15-30 seconds / kb | |
Final Extension | 72°C | 1-5 minutes | |
4°C | Hold | ||
Notes | |||
Recommended DNA Template addition | |||
Genomic DNA | 50-250 ng | ||
Plasmid DNA | 1pg-10ng | ||
Viral DNA | 1pg-10ng | ||
Mg2+ | |||
The final concentration of Mg2+ in 1X I-5 PCR Master Mix is 1.5 mM | |||
Add additional Mg2+ as needed in 0.5 mM increments | |||
Suggested final Mg2+ concentration ranges from 2 mM to 4 mM | |||
2 Step PCR | |||
Use 2 Step PCR is recommended when the primer Tm values are >68°C | |||
PCR Product / Cloning | |||
The 2X I-5 PCR Master Mix results in PCR product with blunt ends | |||
Blunt-end cloning is recommended after PCR with this product | |||
For T/A-cloning, the PCR product should be purified before A-addition |